当部分男性拿到精液检测报告，结果提示无精子症时，往往需要进一步评估睾丸的生精功能。很多患者不免心生疑问：出现无精子症，就意味着必须做睾丸病理活检吗?
其实不一定，“精液生精细胞检查”可以作为无精子症的重要无创评估手段。
01/睾丸内的精子是如何产生的
精子发生在睾丸组织的生精小管中进行，每个生精周期经历3个阶段最终生成精子：
精原干细胞通过有丝分裂增殖，分化成初级精母细胞
初级精母细胞经过第一次减数分裂形成次级精母细胞，随后第二次减数分裂形成精子细胞
精子细胞经过复杂的分化与形态改变，最终形成精子并释放到生精小管管腔。
图1 精子发生模式图
产生的生精细胞主要通过黏着连接、桥粒连接锚定在支持细胞上，接受支持细胞的营养供应、信号调控、物理支撑，使生精细胞有序地排列在生精小管内，精确地完成生精周期。
图2 生精小管内支持细胞与生精细胞连接正常模式图
随着不同生精周期持续的动态更新，衰老、凋亡的生精细胞会自然脱落。
然而，当生精微环境损伤、内分泌稳态失衡、免疫炎症等引起的生精细胞坏死、细胞间连接结构损坏，会导致生精细胞异常脱落。
图3 支持细胞与生精细胞连接异常引起细胞脱落模式图
精液生精细胞检查就是检测精液中生精细胞有没有、有多少，医生就能更清楚地判断：精子发生是否正常进行，生精周期阻滞在哪一阶段。
因此，当无法从精子获得更多关于生精功能的信息时，精液生精细胞是评估睾丸生精功能的重要无创指标。此外，由于该检查无创且样本易获取，可通过动态监测精液生精细胞变化，评估治疗后睾丸生精功能改善情况。
02/传统生精细胞检测方法存在明显局限
现有方法凭“长相”认细胞，太难了。
目前国内实验室主要采用瑞氏-姬姆萨染色检测精液生精细胞，染色后根据细胞着色、形态和大小来辨认细胞。由于精液中细胞成分复杂，除生精细胞外，还存在不同类型体细胞，加上为非特异性染色，该方法存在一定局限：
难以区分形态和大小相近的生精细胞;
衰老、凋亡生精细胞形态结构退变，原本特征改变或丢失，更难判断;
染色效果直接影响判读，重复性与稳定性较低;
主观性强、结果一致性差;
生精细胞定量分析数据缺乏。
图4 精液瑞氏-姬姆萨染色图
这些问题给临床医生带来了一定的困扰。为了解决上述问题，为临床医生提供更准确和丰富的诊断依据，我院科研与生殖男科团队经过多年技术攻关，成功研发“精液生精细胞数字化分析”技术，在国内率先实现对精液生精细胞的精准识别与定量分析，完成了从“形态学观察”到“数字化定量”的跨越，将为无精子症患者的精准诊疗提供更强有力的支持。
03/新技术核心：精准、客观、可量化的数字化分析体系
① 精准识别标志，为生精细胞找到专属“身份证”：
科研团队通过文献调研，筛选、验证了能准确标记三类关键生精细胞(精原细胞、精母细胞、精子细胞)且具有高度生精细胞特异性的标志物，使该技术对生精细胞识别的准确性超过90%。
② 特异性染色标记，给生精细胞“染色标记”：
在精液细胞切片上，采用免疫组化技术给这三类生精细胞分别染上棕色，非目标细胞染成蓝色，使目标细胞一目了然。分析111例精液样本发现，新技术使生精细胞检出率大幅提升，精原细胞由传统方法的8%提升为92%、精母细胞由37%提升为77%、精子细胞由27%提升为84%。
精子细胞标志物定位于顶体区，其阳性信号随精子形成进程呈特征性形态演变(点状、半月形、弓形、扁平帽状)，可据此直观观察精子成熟进程与成熟状态。
图5 生精细胞免疫组化染色图
③ 人工智能精准计数，生精细胞能“数清楚”：
将染色后的切片采用全景数字化扫描，并通过智能分析系统自动识别、区分并精确统计出各类生精细胞的具体数量，计算每类生精细胞的占比。分析95例生精功能障碍男性的精液样本发现，新技术检出的生精细胞平均数由传统方法的不足5个提高到100个以上。
图6 生精细胞免疫组化染色图与数字化分析图
④ 实验重复性好，人员间差异小：
检测体系的批间重复性以及不同操作人员分析结果之间均具有良好的一致性(无显著差异)。
04/临床价值:为无精子症的精准诊断与治疗提供新依据
① 诊疗依据更充分：
精液生精细胞定量分析数据，为临床诊断、病情分析及治疗方案的制定提供更客观、更准确的依据。
② 预测手术取精获精率：
对于拟接受显微取精术的患者，该检查有助于更准确地预测手术取精的获精率。
适用人群:
本检查适用于严重少精子症、隐匿精子症、无精子症患者。
明确诊断是有效治疗的前提：
如您希望进一步了解是否适合此项检查，可咨询您的主诊医生，或通过以下方式联系我们：0755-83861001。
